Влияние Гамапрена на продукцию регуляторных цитокинов при экспериментальной флавивирусной инфекции у мышей

Для заражения мышей использовали ВКЭ (штамм  Абсеттаров), полученный из коллекции штаммов ФГБНУ “ФНЦИРИП” им. М.П. Чумакова РАН.

Динамику продукции ЦТ в сыворотке крови мышей определяли методом ИФА с помощью коммерческих наборов фирм «Genzyme» и  «BioSource» (США) согласно инструкциям по применению, и выражали в пкг/мл.

Инфицирование мышей ВКЭ приводило к развитию острой летальной инфекции. В контроле СПЖ составила 8,4 суток. Под действием ГП, который вводили за 3 и 2 суток до инфицирования мышей ВКЭ, СПЖ возросла до 10,9 суток, а в том случае, когда ГП вводили за 3 суток и одновременно с ВКЭ, СПЖ возросла до 12,5 суток.

У мышей, зараженных ВКЭ, увеличение содержания в сыворотке крови ИФН-g регистрировали на 4-е и 7-е сутки. Напротив, ГП стимулировал продукцию ИФН-g в сыворотке крови мышей уже через 48 часов. В тех же случаях, когда ГП вводили мышам одновременно с ВКЭ, уровень ИФН-g в сыворотке крови повышался на 3-и и 7-е сутки.

При изучении содержания ИЛ-10 и ИЛ-12 в сыворотке крови мышей было показано, что у интактных мышей ГП стимулировал содержание ИЛ-12 на всех этапах проведения опыта, кроме 4-х и 10-х суток. При этом уровень ИЛ-10 не изменялся на всем протяжении опыта, не превышая контрольного.  Иную картину наблюдали при заражении мышей ВКЭ без введения ГП:  стимуляцию продукции ИЛ-12 выявляли на 5-е (во второй половине инкубационного   периода), 9-е и 10-е сутки (в период проявления клинических признаков КЭ) после заражения. Уровень ИЛ-10 возрастал на 1-е (в 12,6 раз), 7-е и 8-е сутки после заражения ВКЭ (в 5,6 и 7,2 раза, соответственно). При введении мышам ГП одновременно с ВКЭ, наиболее значительную стимуляцию выработки ИЛ-12 наблюдали на 4-е, 5-е, 9-е и 10-е сутки. Выработку ИЛ-10 регистрировали только на 3-е сутки после введения ВКЭ и ГП. На всех остальных этапах исследования уровни ИЛ-10 не превышали контрольного показателя.

Таким образом, ГП после введения мышам при вирусной инфекции стимулирует раннюю продукцию ИФН-γ и ИЛ-12 в сыворотке, что, по-видимому, является одним из ключевых механизмов противовирусной активности ГП при его использовании в качестве профилактического средства или на самых ранних стадиях инфекционного процесса.

Вирусы обладают способностью нарушать сбалансированное развитие Th1/Th 2 иммунного ответа, необходимое для формирования эффективного противовирусного иммунитета, а ГП, благодаря стимуляции продукции ключевых цитокинов, обеспечивающих сбалансированное формирование Th1 и Th2 иммунного ответа при вирусном инфекционном процессе, способен восстанавливать этот необходимый баланс. Это свойство ГП в сочетании с прямым противовирусным действием, по-видимому, и обеспечивает защиту от вирусной инфекции.

Ключевые слова: Гамапрен, полипренилфосфат натрия, цитокины, интерферон-гамма, интерлейкин-10, интерлейкин-12, вирусная инфекция, клеточный иммунитет

Summary

Effect of Gamapren on the production of regulatory cytokines in mice following experimental flavivirus infection

Phosphorylated polyprenols-based medicines are known to inhibit the reproduction of viruses in vitro, as well as exert therapeutic effect in experimental viral infections and viral diseases of pets.       

The aim of the study was to assess the effect of Gamapren (GP), the active ingredient of which are phosphorylated polyprenols isolated from mulberry leaves, on the production of key regulatory cytokines (CT) - interferon-gamma (IFN-γ), interleukin-10 (IL-10) and interleukin-12 (IL-12) in experimental infection caused by tick-borne encephalitis virus (TBEV), Absettarov strain, in mice.

The levels of CT production in the serum of mice was determined by ELISA using commercial sets of firms "Genzyme" and " BioSource "(USA) according to the instructions for use.

Infection of mice with TBEV led to the development of acute lethal infection. In the control life expectancy was 8.4 days. Under the action of GP, which was administered 3 and 2 days before infection of mice TBEV, life expectancy increased to 10.9 days, and in the case when GP was administered 3 days before and simultaneously with TBEV, life expectancy increased to 12.5 days.

In TBEV-infected mice an increase in serum levels of IFN-γ was recorded on day 4 and 7. On the contrary, GP stimulated the production of IFN-γ at 48 hours. When GP was inoculated  simultaneously with TBEV, the level of IFN-γ in blood serum increased on the 3rd and 7th day.

When studying the content of IL-10 and IL-12 in the serum of mice, it was shown that in intact mice GP stimulated the content of IL-12 at all stages of the experiment, except for 4 and 10 days. The level of IL-10 did not change throughout the experience, not exceeding the control.  To the contrary, in  TBEV-infected mice stimulation of IL-12 production was revealed att the 5th (in the second half of the incubation period), 9-th and 10-th day (the period of TBE clinical signs) after infection. The level of IL-10 was increased by 1-st (12.6-fold), 7th and 8th day after infection, tick-borne encephalitis virus (5.6 and 7.2-fold, respectively). In mice simultaneously inoculated with GP and TBEV, the most significant stimulation of IL-12 production was observed at 4th, 5th, 9th and 10th days. IL-10 production was found only at day 3 following  GP and TBEV inoculation. At all other stages of the study, IL-10 levels did not exceed the benchmark.

Thus, GP inoculated to the TBEV-infected mice stimulates the early production of IFN-γ and IL-12, which may act as one of the key mechanisms of GP antiviral activity.

Viruses have the ability to disrupt the balanced development of Th1/Th 2 immune response needed to form an effective antiviral immunity, and GP stimulating the production of key cytokines providing a balanced formation of Th1 and Th2 immune response is able to restore this necessary balance. This property of GP in combination with direct antiviral action, apparently, also provides protection against a virus infection.

Keywords:  Gamapren, phosphorylated polyprenols, cytokines, interferon-γ,  interleukin 10, interleukin 12, viral infection, cell-mediated immunity

Сокращения: вирус клещевого энцефалита (ВКЭ), Гамапрен (ГП), естественные киллерные клетки (ЕКК), интерлейкин-10 (ИЛ-10),  интерлейкин-12 (ИЛ-12), интерферон-гамма (ИФН-γ), средняя продолжительность жизни (СПЖ), фосфорилированные полипренолы (ФП), цитокины (ЦТ)

Введение

В предыдущих исследованиях было показано, что иммуномодулирующие препараты на основе фосфорилированных полипренолов, Фоспренил и Гамапрен (ГП) подавляют размножение ряда вирусов в чувствительных культурах клеток [2], а также проявляют терапевтические свойства при экспериментальных вирусных инфекциях [3-5,9], и вирусных заболеваний мелких домашних животных [7,8,10,11].       

Цель исследования: изучить влияние ГП, действующим веществом которого являются фосфорилированные полипренолы, выделенные из листьев шелковицы, на продукцию ключевых регуляторных цитокинов (ЦТ) - интерферона-гамма (ИФН-γ), интерлейкина-10 (ИЛ-10) и интерлейкина-12 (ИЛ-12) при экспериментальной инфекции, вызванной вирусом клещевого энцефалита (ВКЭ) у мышей.

Материалы и методы

В работе использовали мышей линий BALB/c, массой 18–20 г и беспородных мышей массой 5-6 г обоего пола, полученных из филиала "Столбовая" ФГБУН "НЦБТ ФМБА".

 Во всех экспериментах использовали коммерческий препарат ГП производства ООО «ГамаВетФарм», 0,5%. В экспериментах применяли ГП в дозах от 100 до 200 мкг/мл. В качестве плацебо применяли аликвоты комплексного водного растворителя фосфорилированных полипренолов, выделенных из листьев шелковицы.

При воспроизведении вирусной инфекции использовали ВКЭ (штамм  Абсеттаров), полученный из коллекции штаммов ФГБНУ “ФНЦИРИП” им. М.П. Чумакова РАН.

В опытах использовали ВКЭ в виде мозговой суспензии больных мышей–сосунков беспородных мышей, зараженных интрацеребрально. Инфекционную активность вируссодержащих суспензий титровали путем внутримозгового заражения серийными разведениями 1-2х-дневных беспородных мышей–сосунков. Титры исследуемых штаммов ВКЭ рассчитывали по формуле Рида–Менча и выражали в lg БОЕ₅₀/мл.

Мышей заражали ВКЭ внутрибрюшинно однократно в дозе 100 ЛД₅₀/0,2 мл. После заражения проводили ежедневное визуальное наблюдение за животными в течение 21 суток и регистрировали в каждой группе количество больных и павших животных для расчета средней продолжительности жизни (СПЖ).

Динамику продукции ЦТ в сыворотке крови мышей определяли методом ИФА.  Для определения концентрации ИФН-γ использовали коммерческие наборы фирмы «Genzyme» (США), а концентрацию ИЛ-10 и ИЛ-12  оценивали с помощью коммерческих наборов фирмы «BioSource» (США) согласно инструкциям по применению, и выражали в пкг/мл.

Результаты

1.Влияние ГП на течение экспериментальной инфекции, вызванной ВКЭ у мышей

Инфицирование мышей ВКЭ приводило к развитию острой инфекции, завершавшейся быстрым летальным исходом в 100% случаев. Инкубационный период продолжался около 7 дней, после чего начали проявляться клинические признаки, характеризующиеся парезами или параличами с последующей гибелью. В контроле СПЖ составила 8,4 суток (Табл.1, группа 1). Под действием плацебо, которое вводили в 2 вариантах: за 3 и 2 суток до инфицирования мышей ВКЭ, а также за 3 суток и одновременно с ВКЭ, СПЖ практически не изменилась (группы 2 и 3). Под действием ГП, который вводили за 3 и 2 суток до инфицирования мышей ВКЭ, СПЖ возросла до 10,9 суток (группа 4), а в том случае, когда ГП вводили за 3 суток и одновременно с ВКЭ, СПЖ возросла до 12,5 суток (группа 5).

Таблица 1. Эффективность ГП при экспериментальном КЭ у мышей

The effectiveness of GP against experimental tick-borne encephalitis (TBE) in mice

2. Влияние ГП на содержание ИФН-g в сыворотке крови мышей в норме и при инфекции, вызванной ВКЭ.

У мышей, зараженных ВКЭ, но не инокулированных ГП,  увеличение содержания в сыворотке крови ИФН-g регистрировали на 4-е и 7-е сутки после инфицирования (27±6 и 281±79 пкг/мл, соответственно).

Напротив, ГП стимулировал продукцию ИФН-g в сыворотке крови мышей уже через 48 часов – уровень ИФН-g  возрастал от фоновых значений до 98 пкг/мл (табл.2)

Таблица 2. Влияние ГП на продукцию ИФН-g  в сыворотке крови  мышей линии BALB/c

The influence of GP on the production of IFN-g in the serum of BALB/c mice 

В тех же случаях, когда ГП вводили мышам одновременно с ВКЭ, уровень ИФН-g в сыворотке крови повышался на 3-и и 7-е сутки после инфицирования и инокуляции ГП (табл.3)

Таблица 3.Динамика уровня ИФН-g  в сыворотке крови мышей, которым одновременно вводили ВКЭ и ГП

The dynamics of IFN-g level in the serum of mice that were simultaneously inoculated by TBEV and GP

3. Влияние ГП на содержание ИЛ-10 и ИЛ-12 в сыворотке крови мышей в норме и при инфекции, вызванной ВКЭ.

Показано (табл. 4), что у интактных мышей ГП стимулировал содержание ИЛ-12 на всех этапах проведения опыта, кроме 4-х и 10-х суток. Наиболее значительную стимуляцию продукции ИЛ-12 наблюдали на 1-е, 3-е, 5-е и 9-е сутки после введения ГП. При этом уровень ИЛ-10 не изменялся на всем протяжении опыта, не превышая контрольного (8 пкг/мл).

Таблица 4. Влияние ГП на продукцию  ИЛ-10 и ИЛ-12 у мышей линии BALB/c

The influence of GP on the production of IL-10 and IL-12 in BALB/c mice

Иную картину наблюдали при заражении животных ВКЭ без введения ГП. Как видно из данных, представленных в табл.5, ВКЭ вызывал  стимуляцию продукции ИЛ-12 на 5-е (во второй половине инкубационного   периода), 9-е и 10-е сутки (в период проявления клинических признаков КЭ) после заражения. Уровень ИЛ-10 возрастал на 1-е (в 12,6 раз), 7-е и 8-е сутки после заражения ВКЭ (в 5,6 и 7,2 раза, соответственно).

Таблица 5. Динамика продукции   ИЛ-10 и ИЛ-12 у мышей BALB/c, зараженных ВКЭ

Dynamics of production of IL-10 and IL-12 in BALB/c mice infected with TBEV

При введении мышам ГП одновременно с инокуляцией ВКЭ, наиболее значительную стимуляцию выработки ИЛ-12 наблюдали на 4-е, 5-е, 9-е и 10-е сутки (табл.6). Выработку ИЛ-10 регистрировали только на 3-е сутки после введения ВКЭ и ГП. На всех остальных этапах исследования уровни ИЛ-10 не превышали контрольного показателя.

Таблица 6. Динамика уровня ИЛ-10 и ИЛ-12  в сыворотке крови мышей, которым одновременно вводили ВКЭ и ГП

Dynamics of Il-10 and IL-12 levels in the serum of mice, which were inoculated simultaneously by TBEV and GP

Обсуждение

Данные, полученные нами в опытах in vivo, показали, что ГП при двукратном введении мышам до и одновременно с заражением их ВКЭ, снижает летальность в 70% случаев и увеличивает СПЖ (табл.1). В связи с этим, было выдвинуто предположение, что существенным вкладом в механизм связанного с ГП предотвращения развития острого инфекционного процесса является стимуляция продукции ЦТ, способствующих формированию сбалансированного Th1/Th2-иммунного ответа. Для проверки этого предположения мы исследовали в сыворотке крови мышей уровни ключевых при вирусных инфекциях ЦТ [1,13]: ИФН-g, ИЛ-10 и ИЛ-12.

Результаты показали, что у мышей, которых только заражали ВКЭ, но не вводили ГП, уровень ИФН-g возрастает на 4-е и 7-е сутки после инфицирования. Сходные результаты получены и при инфекции, вызванной другим представителем флавивирусов – вирусом желтой лихорадки [16], по отношению к которому ГП  также проявляет противовирусную активность [4]. Наоборот, под действием ГП уровень ИФН-g в сыворотке крови интактных (не зараженных) мышей возрастал уже через 48 часов, после чего резко падал (табл.2). У мышей, которым вводили ВКЭ и ГП, уровень ИФН-g  возрастал на 3-и сутки (табл.3). Полученные данные могут свидетельствовать о том, что при попадании в организм патогена (ВКЭ, штамм Абсеттаров), ГП  дополнительно стимулирует клетки, которые продуцируют ИФН-g,  стимулирующий  цитотоксичность по отношению к инфицированным клеткам.

При заражении животных ВКЭ без введения ГП (табл.5) уровень ИЛ-10 в сыворотке крови резко возрастал на 1-е (в 12,6 раз), 7-е и 8-е сутки после заражения ВКЭ (в 5,6 и 7,2 раза, соответственно). А вот стимуляцию продукции ИЛ-12 под действием ВКЭ наблюдали на 5-е (во второй половине инкубационного   периода), 9-е и 10-е сутки (в период проявления клинических признаков КЭ) после заражения. Это соответствовало срокам развития патологических процессов в ЦНС и выраженным проявлениям клинических признаков заболевания.

Напротив, под действием инокуляции одного ГП  уровень ИЛ-10 у мышей не изменялся на всем протяжении опыта (табл. 4), не превышая контрольного (8 пкг/мл). В то же время содержание ИЛ-12 у интактных (не зараженных) мышей ГП стимулировал на всех этапах проведения опыта, кроме 4-х и 10-х суток. Наиболее значительную стимуляцию продукции ИЛ-12 наблюдали на 1-е, 3-е, 5-е и 9-е сутки после введения ГП.

Наконец, при введении мышам ГП одновременно с инокуляцией ВКЭ выработку ИЛ-10 регистрировали только на 3-е сутки (табл.6). На всех остальных этапах исследования уровни ИЛ-10 не превышали контрольного показателя. А вот наиболее значительную стимуляцию выработки ИЛ-12 наблюдали на 2-е, 4-е, 5-е, 9-е и 10-е сутки.

Таким образом, при одновременном введении мышам ВКЭ и ГП наблюдали коррекцию вирусиндуцированного подавления развития Th1-иммунного ответа - отсутствие стимуляции ИЛ-10, и, напротив, стимуляцию ИЛ-12, как на ранних (на 2-е сутки после введения в организм ВКЭ и ГП), так и на более поздних этапах развития инфекционного процесса (на 4-е и 5-е сутки), что, по-видимому, и обеспечивает защиту животных от высоколетальной вирусной инфекции. Также у мышей, которым одновременно вводили ГП и ВКЭ, повышение уровня ИЛ-12 наблюдали на 9-е сутки (более чем в 1,5 раза по сравнению с контролем), а на 10-е сутки данный показатель снижался до нормального уровня. Это, по нашему мнению, свидетельствует о сформировавшемся балансе Th1- и  Th2-иммунного ответа, защищающем животных от гибели. Напротив, повышенная концентрация ИЛ-12 на 10-е сутки в группе мышей, зараженных ВКЭ и не инокулированных ГП, коррелировала с их гибелью. Таким образом, высокие уровни ИЛ-12, по-видимому, важны лишь на ранних этапах развития инфекционного процесса, вызываемого ВКЭ. На поздних же этапах они могут усугублять клиническую картину и приводить к гибели животных.

Острая форма КЭ, вызванная штаммом Абсеттаров у мышей, характеризуется преобладанием выраженного гуморального иммунного ответа, активация которого на более поздние сроки инфекции оказывается недостаточной для предотвращения развития заболевания. При исследовании появления ЦТ в сыворотке крови инфицированных мышей  наблюдали резкое (с 1-х суток) увеличение концентрации ИЛ-10 и постепенное понижение его концентрации к 4-м суткам.

Следует также отметить, что именно баланс всего каскада ЦТ, а не увеличение или уменьшение концентрации каких-то одних отдельно взятых ЦТ, способен защитить организм животного от высоколетальной вирусной инфекции [1,21].

ИЛ-10, обнаруженный в 1989 г, первоначально называли фактором подавления синтеза цитокинов, затем - ингибитором активности Тх1 [12]. Он  является ингибитором синтеза цитокинов как Thl-клетками (ИЛ-2, -3, ФНО-β, ИФН-γ, ГМ-КСФ), так и макрофагами/моноцитами – (ИЛ-12, ИФН-γ), что приводит к подавлению функций МФ, зрелых Т-клеток и естественных киллерных клеток (ЕКК) [17]. ИЛ-10 подавляет экспрессию молекул МНС II класса, пролиферацию Т-клеток, вызванную митогенами, а также развитие гиперчувствительности замедленного типа. В то же время ИЛ-10 выступает в качестве кофактора ИЛ-2 и ИЛ-7 в отношении пролиферации тимоцитов, служит синергистом ИЛ-4, усиливает пролиферацию В-клеток, защищает их от апоптоза, повышает синтез IgM и IgA [1]. Таким образом, ИЛ-10 служит важнейшим регулятором иммунного ответа, подавляющим активность макрофагов и Thl-клеток и обеспечивающим реализацию некоторых биологических эффектов Тh2 [17].

Для многих вирусных инфекций характерна утрата и функциональная инактивация антивирусных эффекторных Т-клеток, что препятствует клиренсу вирусов. ИЛ-10 подавляет клеточный иммунитет. При экспериментальной инфекции, вызванной у мышей вирусом лимфоцитарного хориоменингита (РНК-содержащий вирус из семейства ареновирусов) уровень ИЛ-10 резко возрастает. Блокада in vivo рецептора ИЛ-10 нейтрализующими антителами приводит к быстрому угасанию инфекционного процесса на фоне возрастания продукции ИФН-γ [14]. Кроме того, IL-10 является физиологическим ингибитором синтеза IL-12 [15].

ИЛ-12 также известен с 1989 [19]. Первоначально его называли фактором, который стимулирует естественные киллеры, или фактором созревания цитотоксических Т-лимфоцитов. Это один из ключевых ЦТ в защите организма от вирусной инфекции [22]. На самой ранней стадии иммунного ответа МФ и дендритные клетки, распознающие патоген, начинают продуцировать ИЛ–12, стимулируя пролиферацию ЕКК и Т-клеток, увеличивая их киллерную активность и способствуя выделению ИФН-g обоими типами клеток. В свою очередь, ИФН-g начинает потенцировать индукцию синтеза IL-12 макрофагами [21].

IL-12 также активирует цитотоксичность макрофагов, он служит естественным  связующим звеном между макрофагами и Т-клетками, между врожденным и приобретенным иммунитетом [20]. Это проявляется в его способности регулировать соотношение клеточного и гуморального иммунного ответа через стимуляцию дифференцировки наивных Т-хелперов в направлении Тh1. Этот эффект в значительной степени опосредован быстрым повышением продукции ИФН-g.  Биологические функции ИЛ-12 осуществляются через связывание с мембранным рецепторным комплексом, состоящим из 2 субъединиц: IL-12R β1 и IL-12R β2, выполняющих различные роли. IL-12R β1 требуется для высокоаффинного связывания с  субъединицей IL-12p40 и связана с Tyk-2, членом семейства Janus киназы (Jak), тогда как  IL-12R β2 опосредует передачу сигнала через три тирозиновых остатка, которые выступают в качестве док-сайта для STAT4 и связаны с Jak-2. IL-12R β2 распознает либо гетеродимер ИЛ-12, либо субъединицу IL-12p35. IL-12R β2 является основой для проведения сигнала внутрь наивных Тh0 для их дифференциации в Тh1[18]. Схема возможного воздействия ГП на активацию сигнального пути Jak/STAT по действием ИЛ-12 представлена на рис.1.

 Рис. 1 Влияние фосфорилированных полипренолов (ФП) на активацию сигнального пути Jak/STAT по действием ИЛ-12 (по 20, модифицировано)

Influence of phosphorylated polyprenols (FP) on activation of Jak / STAT signal path by IL-12 [according to 20].

Под действием ГП происходит стимуляция продукции ИЛ-12. После связывания IL-12p40 и IL-12p35 с IL-12R β1 и IL-12R β2, соответственно, происходит трансфосфорилирование Jak-2 и Tyk-2. Фосфорилированный IL-12R β2 связывается с молекулой STAT4, которая затем димеризуется с другой молекулой STAT4. Гомодимеры STAT4 транслоцируются в ядро и стимулируют транскрипцию гена IFN-γ. Еще одним транскрипционным фактором, играющим важную роль в активации Th1 и продукции IFN-γ, служит T-bet. ИЛ-12 и IFN-γ стимулируют активность и размножение MΦ, ЕКК и Т-клеток, которые также продуцируют ИЛ-12  [20].

Известно, что необходимым условием противовирусного иммунитета является ранний иммунный ответ по типу Th1. Полученные результаты свидетельствуют о способности ВКЭ (штамм Абсеттаров) стимулировать продукцию ИЛ-10, обеспечивающего формирование преимущественно Th2-иммунного ответа, и, как следствие, подавление развития Th1-иммунного ответа на ранних этапах инфекционного процесса. Для защиты от вирусной инфекции нужны Th1,но их образование в данном случае нарушено из-за гиперпродукции ИЛ-10.

Препараты на основе фосфорилированных полипренолов после введения в организм при вирусной инфекции стимулируют раннюю продукцию ИФН-γ, ФНОα и ИЛ-6 и ИЛ-12 в сыворотке [4,6], что, по-видимому, является одним из ключевых механизмов противовирусной активности ГП при его использовании в качестве профилактического средства или на самых ранних стадиях инфекционного процесса.

Вирусы обладают способностью нарушать сбалансированное развитие Th1/Th 2 иммунного ответа, необходимое для формирования эффективного противовирусного иммунитета, а ГП, судя по всему, способен восстанавливать этот необходимый баланс, в частности – благодаря стимуляции продукции ключевых цитокинов, обеспечивающих сбалансированное формирование Th1 и Th2 иммунного ответа при вирусном инфекционном процессе. Это свойство ГП в сочетании с прямым противовирусным действием, по-видимому, и обеспечивает защиту животных от вирусной инфекции.

Литература

1., Ранние цитокиновые реакции при вирусных инфекциях./ Ершов Ф.И Наровлянский А.Н., Мезенцева М.В.// Цитокины и воспаление. ―2004. ―Т.3 N1. ― С.3-6.             2. Кожевникова Т.Н., Морапренилфосфаты подавляют размножение вируса энцефаломиелита Тейлера и накопление вирусного белка VP3 в чувствительных культурах клеток BHK-21 и P388D1. / Кожевникова Т.Н., Викторова Е.Г., Козлов В.Г., Наровлянский А.Н., Санин А.В., Пронин А.В., Ожерелков С.В. //Ж.микробиол. ―2007. ― №3. ― С. 26-30.

3. А.Н.Наровлянский, Противовирусная активность и возможные механизмы действия морапренилфосфатов при  экспериментальной инфекции, вызванной вирусом простого герпеса 1 типа./ Наровлянский А.Н., Ожерелков С.В., Санин А.В., Козлов В.В., Саличев А.В., Есьман А.С., Парфенова Т.М., Пронин А.В., Деева А.В., Изместьева А.В., Кожевникова Т.Н., Сосновская О.Ю..// Журн.микробиол..― 2014 . ― №5. ―С.54-60.            4. Ожерелков С.В.Противовирусное действие препаратов  Фоспренил и Гамапрен  в отношении флавивирусов. / Ожерелков С.В Кожевникова Т.Н., Наровлянский А.Н., Пронин А.В., Санин А.В. // Ветеринария и кормление. ― 2017.  ―N3. ― С.78-80

5. Ожерелков С.В., Защитное действие нового противовирусного препарата Фоспренил при экспериментальном клещевом энцефалите./ Ожерелков С.В, Тимофеев А.В., Новикова Г.П., Деева А.В., Наровлянский А.Н., Санин А.В., Пронин А.В.  // Вопросы вирусологии. — 2000. — Т .45. — С. 33-37.

6.  .Pronin A.V. Polyprenols as Possible Factors that Determine the Instructive Role of Innate Immunity in the Acquired Immune Response /.Pronin A.V,Grigorieva E.A,  .Sanin A.V,  Narovlyansky A.N., Ozherelkov S.V.,.Deyeva A.V,  Danilov L.L., Maltsev S.D., Najid A..// Russian J.Immunol. ― 2002. ― v.7, N2. ―pp.135-142

7. Руднева С.Ю., Лечение папилломатоза ротовой полости у собаки с использованием фоспренила./ Руднева С.Ю. Наровлянский А.Н.,Пронин А.В., Степанова Т.Н., Санин А.В.  //РВЖ МДЖ ―2016. ― N3 ― C.9-11

8. Санин А.В./ Применение иммуномодуляторов при вирусных заболеваниях мелких домашних животных.//РВЖ. МДЖ..― 2005. ― N1. ― С.38-42

9. Санин А.В Разнонаправленное влияние MIF и полипренилфосфата на течение экспериментальной  флавивирусной инфекции у мышей. / Санин А.В Суслов А.П., Третьяков О.Ю., Зварцев Р.В., Саличев А.В., Кожевникова Т.Н., Санина В.Ю., Смирнова Е.Г., Ожерелков С.В.// Ж.микробиол. ― 2011. ― №5 ― С.56-61.

10. Санин А.В Применение Гамапрена при лечении вирусных инфекций у кошек./ Санин А.В,Савойская С.Л., Васильев И.К., Наровлянский А.Н., Пронин А.В., Е.В.Гордеева. // Ветеринария Кубани. ― 2009. ― №6. ― С.29-30.

11. Фурман И.М., Применение препаратов на основе растительных полипренолов при различных формах кошачьего инфекционного перитонита. /Фурман И.М.,  Васильев И.К.,. Наровлянский А.Н, Пронин А.В., Санин А.В.// РВЖ. МДЖ.― 2010. ―№3 ― С.42-43.

12. Abbas AK, Cellular and molecular immunology(7th ed.)/ Abbas AK ,Lichtman AH, Pillai S ―2012―. Philadelphia: Elsevier/Saunders. 

13. Baxter V.K., Interferon gamma modulation of disease manifestation and the local antibody response to alphavirus encephalomyelitis./ Baxter V.K., Griffin D. E.//  J Gen Virol. ―2016 Nov; 97(11).―pp. 2908–2925.

14. Croxford A.L.,  IL-12-and IL-23 in health and disease./ Croxford A.L.Kulig P., Becher B.// Cytokine Growth Factor Rev. ―2014. ―Aug;25(4): ―pp.415-21

15. Hamza T., Interleukin 12 a Key Immunoregulatory Cytokine in Infection Applications/ Hamza T., Barnett J.B., Li B.//  Int. J. Mol. Sci.―2010.― 11(3), 7. ―pp.89-806;

            16. Lam L. K. M., Gamma-interferon exerts a critical early restriction on replication and dissemination of yellow fever virus vaccine strain 17D-204. / Lam L. K. M.Watson A.M., Ryman K.D., Klimstra W.B.// NPJ Vaccines.―2018.―v3.― pp.5.

17.Mosser DM, Zhang X (December 2008). "Interleukin-10: new perspectives on an old cytokine". Immunological Reviews. ― 226 (1)―pp.205–18

18. Nan Y., Interplay between Janus Kinase/Signal Transducer and Activator of Transcription Signaling Activated by Type I Interferons and Viral Antagonism. /Nan Y., Wu C., Zhang Y.// J. Front Immunol. ― 2017. ― 8. ―pp.1758.

19. Trinchieri, G. /Interleukin-12 and the regulation of innate resistance and adaptive immunity.// Nat. Rev. Immunol . ―2003. ― 3.―pp.133-146.

           20. Watford, WT; The biology of IL-12: Coordinating innate and adaptive immune responses./ Watford, WT; Moriguchi, M; Morinobu, A; O'Shea, JJ.// Cytokine Growth Factor Rev. ― 2003.―14, ―pp.361–368.

           21. Zhang C, (Aug 2008). "Interleukin-12 improves cytotoxicity of natural killer cells via upregulated expression of NKG2D"./ Zhang C Zhang J, Niu J, Zhou Z, Zhang J, Tian Z //Human Immunology.― 69 (8). ―pp.490–500. 

         22. Zwirner N.W.,  Regulation of NK Cell Activation and Effector Functions by the IL-12 Family of Cytokines: The Case of IL-27./ Zwirner N.W.,  Ziblat A.// Front Immunol. ―2017. ― 8. ― pp.25. 

Опубликовано:Российский ветеринарный журнал МДЖ №4